动物实验心得体会
老地方整理的动物实验心得体会（精选16篇），经小编精挑细选，希望能帮助到大家。
动物实验心得体会 篇1
来美国加州已经整整1个月，昨天才刚刚办好学校的身份卡，终于可以正式接受动物实验培训了。今天上午，本来是一个来自印度的博士负责培训，但后来她需要去上课，临时换成一个华裔博士（他不会说中文，我只听他说过“剪头发”三个字），这个陈博士很有一些侠客风骨，什么事情都比较主动帮助。他告诉我，最近几天的时间他都可以给我支配，让我十分感动。本文也作为来美1月的体会小结吧。
我要学习的具体内容是如何神经外手术后脑损伤动物模型，就是把老鼠的大脑大概1/6的部位切除。这个实验最重要的是保持手术过程的一致，由于手术容易脑出血，因此手术操作尽量轻柔。
今天上午9点前我早早来到实验室，等到10点后，陈博士过来来说现在就可以开始，我说很遗憾，12点我必须离开，因为我女儿的入学体检安排在1点，第一次做实验怕干不完，言外之意是等明天再说吧。他说没关系，干到什么程度你随时可以离开，我心里说那多么不好意思，如果试验进行到一半，后续的整理要老师来负责。不过我也希望能早点开工，于是就接受了。毕竟开始的有些突然，我本来是准备在他指导下自己来做全部的工作，结果大部分事情都是他帮忙，包括把动物从动物房拿到实验室，准备手术器械，准备手术显微镜等。整个实验中，所有的准备工作几乎都是陈博士代劳，我只做了最核心的工作，我想起在国内读博士的时候，许多技术活都是从打下手，当学徒开始的。
由于第一次做这个实验，动作比较缓慢，到12点才终于把脑子切掉，后面的缝合，以及动物护理等都没有时间做了，这些内容都留给陈博士了。
开始前，陈博士问我为什么要用这个模型，你过去不是做脑出血的模型吗？我说主要是觉得这个损伤是属于计划性损伤，比较符合临床实际，很适合开展预适应方面的研究。另外我觉得在中国目前使用的比较少，我也希望能把这个模型引进到中国。他听后非常高兴，认为我的观点是非常好的，他也这么认为。
结合最近见习的训练的'情况，我觉得这里关于动物实验方面值得学习的内容有许多。这里暂时只讲几点体会。
一是对动物的管理非常严格。动物房的条件非常好，比实验室的卫生条件还要好，居住空间有明确的规定，一只大笼子内只能有2只大鼠。进入动物房必须登记，拿走几只动物，动物的编号和实验目的要详细记录。
二是实验步骤的记录非常详细。到具体实验过程，详细的记录更能体现。每只动物都有一个档案，编号，体重，麻醉时间，手术时间，每一个具体的操作步骤都有详细的记录。动物模型做好后，经过适当恢复，送回动物房，仍需要登记。当处死动物前，每个都需要进行行为学的记录，进行动物一般情况的观察和记录。然后处死动物，处死动物必须采用安乐死。动物处死后取出大脑要进行照相记录，然后根据实验目的对脑组织进行后续的处理。总之，在关于动物实验的整个过程都有非常详细的记录。如果那个动物有可能出现异常结果，可以回头寻找原因。过去有许多老师在进行研究生培养的督导时，经常建议能作好原始记录，但都是强调记录本如何规范，对内容和细节并不关心，实际上记录本的方式并不是理想的记录方式。原始记录不一定都要在一个本子上体现。
三是协作精神。我来这里一个月，听到最多的问题是，你要做什么研究，我们是否可以谈谈，实际上大家都非常相互关心别人的研究内容，随时开展相互讨论，相互请教的事情也随时可见，也有许多人出来结果过来请教如何解释。我的研究内容涉及到几个基本的内容，其中一个是动物模型，因为过去没有做过需要从头学习，结果本组内至少有一大半人都积极要求指导。即使那些不主动的，去看他们实验也是随时停下来让我看，并耐心给我解释注意细节。总的感觉是他们都希望把自己所有经验，所有技巧都不作任何保留传授给你。另外一个研究内容是动物行为学检测，这个因为需要其他人协助双盲对照，结果早就有人预约说可以帮助解决。总之，在这里大家的相互协作精神非常的普遍。你不会看到有人怕别人学走你的思想，怕别人掌握了你独门绝技。
动物实验心得体会 篇2
今天就要进行动物学实习的展示了，好紧张，会不会抽到我答题呢？很有可能，看来不能随便乱抱佛脚，我会努力准备，不会让组里成员失望的，当然，前提是抽到我啦~~
为期5天的动物学实习，在端午节那天结束了。由于有了植物学实习的经验，我们对动物学实习的痛苦早已做好了心理准备。植物学实习的时候，我们是集体行动。所有人都围着老师和植物转。而动物学实习，我们的自主性极大。整个动物学实习下来，我觉得最重要的是“眼明手快”。那些瓢虫、蛾、蜂等等都隐藏在密密麻麻的树叶或草丛中，需要仔细地观察才能发现。而在帽峰山最难捕捉的就是大大的凤蝶了。它们“身手敏捷”，每次从深谷飞出，都引起一片惊呼，但我们尝试了无数次，最终还是没有抓住！很失望！但是，在火炉山，由于地势较为平坦，峡谷不深，加上有了帽峰山捕蝶的经验，我们这次很顺利地捕捉到了很多种类的蝴蝶。
可能是由于小时候，经常在山里玩耍，去摘野果，捉蝉，掏鸟窝之类的，我一点也不害怕那些动物，反而觉得很有趣。当然，我们抓动物不是随便乱来的。设想过我们要抓哪一类动物，我们初步了解了它们的习性，然后开始寻找目的地。在火炉山，我就在水边的小石头下，抓到一条很大的马陆，还有在浅水处抓到一只小蟹，很开心！上山不久，我还抓到一只正在蜕皮的蝉！那个蝉壳已经从背中线裂开，可以看到幼蝉绿色的背部！等到11点半休息的时候，居然发现蝉已经完全从壳里钻出来了！绿绿的！整个过程也就不到一个小时！可惜抓到它时，卡氏液不在我们这个小组（因为我们这个大组分成两个小组来行动了）。不然可以把它固定在壳里。也很可惜，那天没能向老师说明我观察到的这个现象。
在大学城，我在湖边抓了一只有绿色条纹的蜻蜓。这种蜻蜓很难抓！它总是在湖边忽悠一下就飞走。我觉得自己有点邪恶啊！因为我是趁它产卵的时候，用捕虫网抓住它的。在野外实习的过程中，我们还看到了蜻蜓交尾和蝴蝶交尾的现象。学习了动物学之后，我们不再以玩乐的眼光来观察动物，而是从专业的角度来观察思考，也发现了一些动物世界中有趣的事情，而不仅仅是看大盘表面现象。
在整个实习过程中，我们小组分工合作，大组的联系就不够紧密。实习路上，我们打趣说我们这是西天取经呢！
制作标本的时候，我们一起查阅资料，为确定每一只虫子的目而纠结；制作标本的时候，为蚂蚁的微小而叹息。制作标本的过程，我们不断翻书查阅，使我们的知识得到一个梳理和巩固。
我觉得，这次动物学实习又一次增进了小组成员之间的'感情，增强了同学们之间的了解，为我们的大学生活增加了更多有趣的故事。同时，也学习到了很多知识。最后，老师人性化地取消了个人考试，让我们很感动！
三天的到外实习，很累很辛苦但真的很快乐~~~想想就够乐的咯，这辈子也就这次动物学实习了，真的没有什么机会可以以这副武装到广州的帽峰山、火炉山和大学城横行啊！哈哈，想到别人的眼光我们虽然一开始也挺尴尬的，可是后来，大家都觉得自己开心就好，何必在乎其他人的眼光。爬山爬到累的腿都直抖了~~~火炉山的阶级太恐怖了~~哪有那么陡的~~顺便崇拜一下那些每天登山的人~~最近肯定提到爬山，肯定不去了。我们组的合作良好，昆虫捉到很多，蝴蝶扑到了很多，大家都是捕蝶大户了。希望明天的展示顺利进行，老师有问我们必答！加油啦加油啦
动物实验心得体会 篇3
我们实验都是拿裸鼠做的，预实验是我扎了一只，打了4—5针一针都没进，后来让我们科的一个护士来扎都扎不进去！并且让人倍感压力的是实验组和对照组要对比，所以要求打进的肿瘤细胞量得一致！小老板很严格，要是打不好自己准挨说呢！
裸鼠很贵，练习的空间很小！后来无意中我们动物房的其他实验组要处理实验完成的老鼠，我就求了求让他们，让他们把裸鼠先别处死，我帮他忙养着，然后我可以拿来练习了。后来经过了自己的摸索和联系，现在尾静脉一次注射成功的概率在80%以上呢。现把经验总结如下：
2、把老鼠装到刚才那个装置里，在尾巴静脉注射前先要拿50℃左右的水泡一泡，1分钟，切忌用很热的水，会把尾巴烫脱皮然后感染呢。泡完后会看到尾静脉明显的充盈起来了（此步骤十分的重要）。
3、然后就该注射了，我一开始做的时候是找一个平面，就是能让尾静脉平行的面，可以东西踮起来或者用手垫着把尾静脉拉成一个平面！总的原则就是把尾静脉拉平、拉紧了。
动物实验心得体会 篇4
杂谈实验动物学就这样匆匆结束了，总觉得时间过得很快，心里有种说不出的不舍。记得最初选修这门课的时候，心里很是没低，因为以前从来没有接触过动物实验，（由于专业的原因吧）虽然很想学，可又担心会跟不上其他同学，甚至会考试不过影响学位。不过最后还是选了，如果不学也许就永远不知道它其中所蕴含的乐趣和那种追求医学研究时所必须的严谨，现在想想当时的选择是多么的正确，正是因为这次犹豫中的选择，让我爱上了这门课。记得第一次实验课是让学捕捉实验鼠，并做常用的给药方式，第一次抓到老鼠时的兴奋至今还难忘，这个实验还算简单，所以很顺利就做完了老师所要求的，同时也给了我很大的信心去学好这门课。以后每次试验课我都会早早的去，很用心的去记录老师讲的每个实验细节，直至最后一节课。有时候看到那些可爱的实验动物总不忍心去实施残忍，每当看到因为自己操作失误而致动物大出血，最后挣扎到死亡时，心中都有种莫名的难受。也有同学对我说既然选择去做实验就不能有怜悯，手要狠，我知道她说的是对的，可是我需要去慢慢的适应。后来我就笑着对同学说，如果不能避免残忍，那就让我们认真的去做好每个实验，合理的去利用每一个实验动物，在不影响实验结果的前提下最好一鼠多用，虽然最终都是要处死的，但至少死有所值吧。
随着对医学研究的不断深入，动物实验在医学、药学中的应用也会越来越广，它的重要性将会被更加重视。医学的发展历史告诉我们：有些问题单凭临床经验积累需要花费很长时间才能得到解决，或者虽花费很长时间，问题仍得不到解决，而通过动物实验有些问题就可以得到迅速解决。在我们追逐科研成果的同时，也一定不要忘记去适时的保护这些为我们做出了巨大贡献的动物，如果说，实验是为了更长远的社会利益，那几乎所有的医学科研成果是以无数动物的.生命作为代价的，所以请让我们用仁慈的心去善待那些有生命的动物们吧。
通过学习这门课，最大的收获我觉得并不是学会了多少种实验的操作（当然这是最基本的要求），而是通过实验更让我们受益的是它需要的这种执着，细心和认真严谨的态度，还有那种团队合作的精神。任何一个实验都是需要大家共同努力去完成，任何一个细节出了问题都会导致最终的失败，所以就要求我们去负责的对待每个环节，每一个步骤。只要把握好整个过程，就会顺利的达到预期的目的
最后，更要感谢的就是这么多天来一直陪伴我们，不厌其烦、耐心教诲的所有实验室老师们，是你们不仅让我们学会了基本的实验操作，激起了我们对实验课的兴趣，更主要的是从你们身上让我们看到了对那种学术热爱、严谨的精神和为人师表的优秀风范，也许我们以后就不需要再做实验，也许这真的就是我们研究生生涯的最后实验课，但你们的精神和教诲会影响我们的一生，衷心的谢谢您：最亲爱的老师。
动物实验心得体会 篇5
我们实验都是拿裸鼠做的，预实验是我扎了一只，打了4—5针一针都没进，后来让我们科的一个护士来扎都扎不进去！并且让人倍感压力的是实验组和对照组要对比，所以要求打进的肿瘤细胞量得一致！小老板很严格，要是打不好自己准挨说呢！
裸鼠很贵，练习的空间很小！后来无意中我们动物房的其他实验组要处理实验完成的老鼠，我就求了求让他们，让他们把裸鼠先别处死，我帮他忙养着，然后我可以拿来练习了。后来经过了自己的摸索和联系，现在尾静脉一次注射成功的概率在80%以上呢。现把经验总结如下：
1、把老鼠装到刚才那个装置里，在尾巴静脉注射前先要拿50℃左右的.水泡一泡，1分钟，切忌用很热的水，会把尾巴烫脱皮然后感染呢。泡完后会看到尾静脉明显的充盈起来了（此步骤十分的重要）。
2、然后就该注射了，我一开始做的时候是找一个平面，就是能让尾静脉平行的面，可以东西踮起来或者用手垫着把尾静脉拉成一个平面！总的原则就是把尾静脉拉平、拉紧了。
动物实验心得体会 篇6
来美国加州已经整整1个月，昨天才刚刚办好学校的身份卡，终于可以正式接受动物实验培训了。今天上午，本来是一个来自印度的博士负责培训，但后来她需要去上课，临时换成一个华裔博士（他不会说中文，我只听他说过“剪头发”三个字），这个陈博士很有一些侠客风骨，什么事情都比较主动帮助。他告诉我，最近几天的时间他都可以给我支配，让我十分感动。本文也作为来美1月的体会小结吧。
我要学习的具体内容是如何神经外手术后脑损伤动物模型，就是把老鼠的大脑大概1/6的部位切除。这个实验最重要的是保持手术过程的一致，由于手术容易脑出血，因此手术操作尽量轻柔。
今天上午9点前我早早来到实验室，等到10点后，陈博士过来来说现在就可以开始，我说很遗憾，12点我必须离开，因为我女儿的入学体检安排在1点，第一次做实验怕干不完，言外之意是等明天再说吧。他说没关系，干到什么程度你随时可以离开，我心里说那多么不好意思，如果试验进行到一半，后续的整理要老师来负责。不过我也希望能早点开工，于是就接受了。毕竟开始的有些突然，我本来是准备在他指导下自己来做全部的工作，结果大部分事情都是他帮忙，包括把动物从动物房拿到实验室，准备手术器械，准备手术显微镜等。整个实验中，所有的准备工作几乎都是陈博士代劳，我只做了最核心的工作，我想起在国内读博士的时候，许多技术活都是从打下手，当学徒开始的。
由于第一次做这个实验，动作比较缓慢，到12点才终于把脑子切掉，后面的缝合，以及动物护理等都没有时间做了，这些内容都留给陈博士了。
开始前，陈博士问我为什么要用这个模型，你过去不是做脑出血的模型吗？我说主要是觉得这个损伤是属于计划性损伤，比较符合临床实际，很适合开展预适应方面的研究。另外我觉得在中国目前使用的比较少，我也希望能把这个模型引进到中国。他听后非常高兴，认为我的观点是非常好的，他也这么认为。
结合最近见习的训练的情况，我觉得这里关于动物实验方面值得学习的内容有许多。这里暂时只讲几点体会。
一是对动物的管理非常严格。动物房的条件非常好，比实验室的卫生条件还要好，居住空间有明确的规定，一只大笼子内只能有2只大鼠。进入动物房必须登记，拿走几只动物，动物的编号和实验目的要详细记录。
二是实验步骤的记录非常详细。到具体实验过程，详细的记录更能体现。每只动物都有一个档案，编号，体重，麻醉时间，手术时间，每一个具体的操作步骤都有详细的记录。动物模型做好后，经过适当恢复，送回动物房，仍需要登记。当处死动物前，每个都需要进行行为学的记录，进行动物一般情况的观察和记录。然后处死动物，处死动物必须采用安乐死。动物处死后取出大脑要进行照相记录，然后根据实验目的对脑组织进行后续的处理。总之，在关于动物实验的整个过程都有非常详细的记录。如果那个动物有可能出现异常结果，可以回头寻找原因。过去有许多老师在进行研究生培养的督导时，经常建议能作好原始记录，但都是强调记录本如何规范，对内容和细节并不关心，实际上记录本的方式并不是理想的记录方式。原始记录不一定都要在一个本子上体现。
三是协作精神。我来这里一个月，听到最多的问题是，你要做什么研究，我们是否可以谈谈，实际上大家都非常相互关心别人的研究内容，随时开展相互讨论，相互请教的事情也随时可见，也有许多人出来结果过来请教如何解释。我的研究内容涉及到几个基本的内容，其中一个是动物模型，因为过去没有做过需要从头学习，结果本组内至少有一大半人都积极要求指导。即使那些不主动的，去看他们实验也是随时停下来让我看，并耐心给我解释注意细节。总的感觉是他们都希望把自己所有经验，所有技巧都不作任何保留传授给你。另外一个研究内容是动物行为学检测，这个因为需要其他人协助双盲对照，结果早就有人预约说可以帮助解决。总之，在这里大家的相互协作精神非常的普遍。你不会看到有人怕别人学走你的思想，怕别人掌握了你独门绝技。
动物实验心得体会 篇7
在暑假期间，我最喜欢看的节目就是cctV10的动物世界，这次的节目进行很大的改动，比如“最毒的动物”，或者是“致命毒液”其中都讲到了一种相当出名的杀手——黑寡妇。黑寡妇也许是世界上声名最盛的毒蜘蛛了，但一般来说，被黑寡妇咬伤并不会致命。黑寡妇的腹部有红色的沙漏状图案，这是它的标志性特征。“黑寡妇”蜘蛛身体为黑色，雄蜘蛛腹部有红色斑点，身长在2—8厘米之间。由于这种蜘蛛的雌性会在搭配后立即咬死配偶，因此民间为之取名为“黑寡妇”。
黑寡妇蜘蛛（简称黑寡妇）是一种具强烈神经毒素的蜘蛛。它是一种广泛分布的大型蜘蛛，热带及温带地区发现。成年雌性黑寡妇蜘蛛腹部呈亮黑色，并有一个红色的沙漏状斑记。另外黑寡妇蜘蛛这一名称一般特指属内的一个物种Latrodectusmectans，有时也指多个寡妇蜘蛛属的物种，其中有31已被识别的物种包括：澳洲红背蛛和褐寡妇蜘蛛。
黑寡妇广泛分布于世界各地。常见的类型是L。geometricus被发现几乎遍布全球。其他的品种通常比较稀少，并且分布范围稳定。然而，颜色花纹的多种多样并不是黑寡妇之间的唯一区别。这个物种也能从猎食方法，外形特征，网的编织，卵包的形状，躲避场所，体型大小，搭配方式等等不同来区别。即使从毒性上也能区分不同种类。应该注意的是成体雄性是没有毒腺的。当你被雌性黑寡妇叮咬以后，你死亡的风险只有百分之五。但你的身体都会遭受剧痛。尽管是轻微的叮咬，他们的毒性直接影响到中央神经系统和肌肉组织。
黑寡妇蜘蛛的毒液会促进神经递质乙酰胆碱（acetylcholine）的释放。乙酰胆碱作用于肌肉，能引起肌肉的收缩。一般而言，黑寡妇蜘蛛的毒素对儿童和体弱者威胁较大。在毒液中含有多种活性成分。毒液中含有一种叫做latrotoxin的蛋白质，这种蛋白可以促进乙酰胆碱的释放；此外还有一些分子量相对较小的多肽和毒素，这些小分子物质与细胞表面的阳离子通道在空间结构上显示出一定的同源性，能够与离子通道特异结合，它们能影响钙、钠和钾等阳离子的离子通道1；另外还有更简单的小分子化合物。
黑寡妇的毒液比草原响尾蛇还厉害15倍，在美洲市场，它的价值比黄金贵千百倍，一盎司最少230万美元，此外，它的蛛丝强度超过目前所有已知的天然纤维，甚至连以坚韧著称的钢丝和凯夫拉纤维都望尘莫及，它的韧性，在拉断前足可以延伸27%，强度则超过普通蛛丝的2倍。
但是尽管其毒素的毒性很强，但注射剂量很小，且黑寡妇蜘蛛咬人导致死亡的案例非常少。所以大家不用特别害怕的。
在野外实习的'这些天，大家一起外出捕捉昆虫，在捕捉的同时我们学习到了昆虫的生活习性，比方说我们总能在隐蔽的土壤中找到蚯蚓，潮湿的地面上就能看到蟾蜍等等；同时也锻炼了我们吃苦耐劳的品质，更是一次将大家胆子变大的绝美机会，即使每次看到蜘蛛都会躲得远远的我，也大着胆子抓了一次，为了各种标本，大家几乎都豁出去了，连马蜂我们都抓了，当然，牺牲有点惨痛；在制作标本的时候，大家都是小心翼翼的，屏住呼吸，锻炼了我们细心谨慎的好习惯；在给各个昆虫分科时，翻阅资料，了解了更多的知识，同时通过那本厚厚的彩页的昆虫分类书，我们还见识了更多我们没有抓到的昆虫，学生物，书就该是彩色的好呀。
动物实验心得体会 篇8
我之前从未接触过动物实验，实验室内也没有人做过动物实验，实验内容涉及小鼠灌胃，不知如何下手，内心有点慌，于是就从网上搜索视频开始学习。先买回来四只小鼠，想着练习基本的实验操作，我之前连小鼠抓取都不太懂，虽然大学学习过，但几年没有接触还是手生的狠，这次就只好硬着头皮上了。好了废话不多说回归正题。
关于灌胃，小鼠的抓取很重要，右手抓住鼠尾，左手沿鼠背往上抓住颈背部皮毛，同时确保前肢皮毛也有部分抓取，这是为了固定小鼠前肢，防止注射时小鼠前肢抓握针头。抓取固定小鼠之后，取带有灌胃针的注射器，沿着小鼠右嘴角插入(因左手固定小鼠，所以沿右嘴角进针比较方便)，贴着小鼠上颌进针，然后再进针会遭遇抵触感，此时到达小鼠咽部，这时不要硬插针，稍微停一下，到达咽部后把针稍微挪动感觉放置咽喉中部，此时将注射器抬起与身体呈竖直的状态，再进针小鼠会有抵抗，但没有关系，顺着抵抗感慢慢进针，随后会有落空感，此时就表明针已进入小鼠胃中，注射药液，拔出针头即可。
希望对初做动物实验的'小白有所帮助，这都是反复尝试摸索出来的，之前能灌进去胃都是偶然时间，搞得小鼠受折磨，我也难受，掌握一点技巧，小鼠也能少受罪
动物实验心得体会 篇9
肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。
1材料与方法
1.1实验动物：SD大鼠24只，体重做任何处理;B组为实验组，将大鼠称重麻
200-290g，雌雄随意，由成都医学院实醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的验动物中心提供。量)后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断;1.2实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。 C组也为实验组，将大鼠称重麻醉(用3.6%1.3实验仪器与器械：电子天平，注射器，水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量)后，找烧杯，手术器械(解剖刀，解剖盘，解剖出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察剪刀，手术线眼科镊等)、滤纸，计时器大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身等。体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有的鼠。
2方法
在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，将实验动物随机分为3个组，A组B组C然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面组各8只大鼠。A组为假手术组，将大鼠称的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最重，麻醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数(肺100g/1mL的'量)后，仅找出迷走神经，不系数=肺重量(g)/大鼠体重(kg))。
3实验结果现象
在整个实验中，B组C组中各有一只大鼠在剪断迷走神经时不慎将颈总动脉剪断，导致大出血死亡，A组B组C组都没有出现湿啰音，也无咳嗽，鼻孔与口腔无粉红色泡沫样液体出现，也没有抽搐，整个试验期间大鼠都没有死亡。根据实验结果现象分析，并没有出现肺水肿。
4结论与讨论
肺水肿是临床较为常见的综合病症，有很多的致病因素。由于对其发病机尚未完全阐明，因此，常常借助于一些动物模型进行发病机制和相关治疗的试验研究。结扎迷走神经是急性肺水肿动物模型是常用的一种动物模型。迷走神经支配呼吸、消化两个系统的绝大部分器官以及心脏的感觉、运动以及腺体的分泌。因此，迷走神经损伤可引起循环、消化和呼吸系统功能失调。在这次试验中，结扎迷走神经一段时间后，即可观察到B、C与A组对照出现的显著性差异，首先为大鼠的呼吸急促、紫绀;试验中观察到A组大鼠双肺呼吸音清晰，试验B、C两组大鼠双肺呼吸急促浑浊，并且有少许的红色粘液出现在鼻孔，显示试验组发生肺水肿，肺泡弥散功能严重降低;试验后解剖各组大鼠，对照组双肺饱满，呈粉红色，表面光滑，未见淤血，肺切面未见溢出粉红色液体。试验组肺体积明显增大、被膜光亮、湿润，表面呈现红褐色或暗紫色，可见片状淤血出血斑。目前，国内大量研究表面，肺重系数是一个衡量肺水肿比较好且准确的指标。
大鼠经过结扎迷走神经可以在短时间内诱导肺水肿的发生，并且通过检测几项指标都可以观察到明显的变化，效果较好。夹闭迷走神经来诱导大鼠肺水肿动物模型简单易操作实施，成本小，重复性高，可以作为临床上比较理想的肺水肿动物模型
动物实验心得体会 篇10
凭着一股执着的信念，抱着满腔的热情，更有初生牛犊不怕虎的勇气，我们实验成员四人走到了一起，展开了创新性实验为期一年的探索之旅。
综合现有的研究成果，进行有区域、分阶段的实地考察，设定单一的研究因素，取样、检测、分析、总结，一点一滴地寻找出影响蛙类生境的各项因素，并通过实验来设定不同的实验对照组，从不同的生长发育阶段的青蛙与福寿螺的相互影响关系及不同理化性质水样对青蛙的生长发育的影响关系等方面进行探究，验证影响蛙类生长发育的主要因素，从而在保护蛙类的工作上取得一定的进展，这就是我们实验的计划步骤。然而，实验进行得并不顺利。首先在专业知识水平上，我们显得力不从心。所以在准备阶段，我们就耗费了大量的时间和精力去摸索，通过各方面的途径去搜集相关的`信息资料，并结合韶关的实际地理位置及气候特点，初步制定一系列认为确实可行的实验方案。此外，我们积极联系实验导师进行分析指导。接下来的时间里，我们就按实验方案展开了野外实验及实验室单一对照实验的工作。由于需要上课，我们的实验只能利用极其有限的课余时间来进行;而又由于实验涉及的地点范围比较广，我们的时间安排的十分紧凑，而作为非韶关人的我们实验四人，对韶关的地理区域又是一个难题。因此，我们只能步步探索，由近及远的分阶段进行。更不尽人意的是韶关多变的天气常常是我们的拦路虎，本已安排好的实验内容就是因多变的天气而被迫更改，有时是被突如其来的大雨淋得措手不及，有时又被似火骄阳晒得头冒金星，再加上难以把握的实验研究对象及相关因素的变更，实验的难度远在我们的意料之外。但既选之，则安之，困难并没有把我们吓倒，在次次的困难面前，我们始终紧咬牙关，从最小处分析起，从最有可能处入手，共同鼓励，步步克服，用最默契的行动来继续着实验的每一个步骤，所以在最迷茫的时候，我们都是相互地笑着走过。
当然，实验过程中的预期的或是意料之外的收获总能增加我们奋斗的动力，让我们感到欣喜或快乐的事情也常有出现。半年多的时间里，一起赤足涉水，一起选择样方，一起饲养实验动物，一起挤公交，一起撑开雨伞，一起遮挡太阳，一起摸索，一起分享。每一天的时间总是那么有限，而我们总是过得分外的充实，我们会为每一次出行而兴奋不已，也会为每一次的目标尽最大的努力，每个人不同的思维角度最终总是回归成一条满意的直线......
呵呵，如果说道不同不相为谋，那么我们实验成员四人就是道相同共为谋了。实验仍在继续，我们的目光也放得更远了，这次的实验不仅是提供一个创新平台予我们，更让我们身心有了另一次的成长的机会。
动物实验心得体会 篇11
大二的时候，我在大学的网站上得知了大学生SRP项目计划的申报。由于我和同学都很想尝试一下，我们在看了相关的文章以及在网上搜集了一些资料后，带这对科研研究的兴趣，我们很谨慎地向老师征求作我们指导老师的意见。老师欣然接受，并给了我们两本文献帮助我们进行研究。12月份课题得到大学立项之后，我们就着手开始为课题做准备。我们从20__年_月进入化学化工学院研究生实验室，从事“新型配合物敏感载体PVC膜离子选择性电极的构建及表征”课题的有关实验。在大学生研究训练计划“SRP”的实施过程中，我们阅读了大量的科技文献，特别是部分英文文献的学习，大大开拓了我的视野、拓宽了我们的知识面。在大量文献和实际操作的基础之上，我们认真思考，进行实验的设计和规划、策划，这锻炼了我们的独立思考能力。平时，我们还不断的向老师、学长请教，与同学、朋友交流，无形中增强了我们的学习能力和交流能力。它不仅是课堂教学的延伸和补充，而且对于激发我们的学习兴趣，开阔我们的视野，培养我们的探究精神，了解最新的科技动态，提高我们的动手能力和分析、解决问题的能力，都是十分有意义的。通过半年多的实验工作，使我们对从事科学研究和实验操作有了较为深刻和清晰的认识。首先通过查阅大量的资料，对本课题有了一个整体的、清晰的认识，在指导老师热心帮助下，主动参与确定具体实验方案、进程，并亲自动手进行实验操作，在实验过程中不断地思
考和分析、解决实验中出现的各种问题，取得了一定的成绩。在研究生实验室的浓厚实验氛围内，在这个温暖欢快的大家庭里，我们在思想和心理上不断的成长。
在实验的过程中，我们遇到了很多的问题，比如在有机合成部分，需要的时间特别长，有时候都从早上10点多一直到晚上11点多钟，我们小组成员就轮流看管这合成反应。在就如实验的药品没有按预期的'到达，导致了实验的终断，我们只好了延迟申请。
做实验真的很苦、很累、很枯燥，但是看到实验室的师兄师姐们都很努力，这也平添了我们几分吃苦耐劳的精神。在经历了一些挫折和考验之后，我们感到自己变得更加的顽强和坚韧了。人贵有恒，就因为做到持之以恒实在是难。人世间为什么难以有恒呢?主要原因是人有惰性。天长日久，便觉得烦，觉得累，觉得苦，于是松懈，于是停顿，于是停止，于是前功尽弃、功亏一篑。任何事情的成功，都不可奢望一蹴而就。俗话说“功到自然成”。要想成就一番事业，就必须具备持之以恒的品质。而在这次SRP项目当中，我算是真正的理解了这四个字的含义。
在SRP实习过程中，我深深的感受到所学知识的肤浅和在实际运用中的专业知识的匮乏。刚开始的一段时间里，对一些工作感到无从下手，茫然不知道所措，这让我感到非常的难过。总以为自己学的不错，一旦接触到实际，才发现自己知道的是多么少，这些与实践还有一段距离。老师常说理论要和实践相结合才能发挥我们自身最大的价值。当我真正独立去实践，去体验的时候，我才突然发现：原来那也不是一件很难的事情。
这次实习让我深刻明白了许多做人道理，向他人虚心求教，与人文明友好交往等一些做人处世的基本原则都要在实际生活中认真的贯彻，好的习惯也要在实际生活中不断培养。在工作中和其他成员保持良好的关系是很重要的。对于自己在校大学生，面临踏入社会的人来说，需要学习的东西还很多，他们就是最好的老师，正所谓“三人行，必有我师。”这次所学到的经验和知识大多来自老师和小组成员的教导。我们每完成一项工作都会向老师征询意见，总结以前的工作并且计划接下来的工作，所以与老师的有效配合也是我们结题的重要的一个方面。我们以后还要争取更多的这样的训练来完善自己充实自己。
“千里之行，始于足下”，在这为期两年的课题研究过程当中，我们感觉收获颇多，受益匪浅。这次SRP实践，我认为是一次成功的有用的实践。它是我大学期间的一段重要的经历，也是我一生中的一笔宝贵财富。在此感谢学校给了我们这次锻炼的机会，最后，我用几句话来总结我的SRP实践心得体会：道路是曲折的，但前途是光明的。我们要积极地面对困难，挑战自我。
动物实验心得体会 篇12
肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。
1 材料与方法
1.1 实验动物：SD大鼠24只，体重做任何处理;B组为实验组，将大鼠称重麻
200-290g，雌雄随意，由成都医学院实醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的验动物中心提供。 量)后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断;1.2 实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。 C组也为实验组，将大鼠称重麻醉(用3.6%1.3实验仪器与器械：电子天平，注射器，水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量)后，找烧杯，手术器械(解剖刀，解剖盘，解剖出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察剪刀，手术线眼科镊等)、滤纸，计时器大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身等。 体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有的鼠。
2 方法
在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，将实验动物随机分为3个组，A组B组C 然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面组各8只大鼠。A组为假手术组，将大鼠称的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最重，麻醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数(肺100g/1mL的量)后，仅找出迷走神经，不系数=肺重量(g)/大鼠体重(kg))。
3 实验结果现象
在整个实验中，B组C组中各有一只大鼠在剪断迷走神经时不慎将颈总动脉剪断，导致大出血死亡，A组B组C组都没有出现湿啰音，也无咳嗽，鼻孔与口腔无粉红色泡沫样液体出现，也没有抽搐，整个试验期间大鼠都没有死亡。根据实验结果现象分析，并没有出现肺水肿。
4结论与讨论
肺水肿是临床较为常见的综合病症，有很多的.致病因素。由于对其发病机尚未完全阐明，因此，常常借助于一些动物模型进行发病机制和相关治疗的试验研究。结扎迷走神经是急性肺水肿动物模型是常用的一种动物模型。迷走神经支配呼吸、消化两个系统的绝大部分器官以及心脏的感觉、运动以及腺体的分泌。因此，迷走神经损伤可引起循环、消化和呼吸系统功能失调。在这次试验中，结扎迷走神经一段时间后，即可观察到B、C与A组对照出现的显著性差异，首先为大鼠的呼吸急促、紫绀;试验中观察到A组大鼠双肺呼吸音清晰，试验B、C两组大鼠双肺呼吸急促浑浊，并且有少许的红色粘液出现在鼻孔，显示试验组发生肺水肿，肺泡弥散功能严重降低;试验后解剖各组大鼠，对照组双肺饱满，呈粉红色，表面光滑，未见淤血，肺切面未见溢出粉红色液体。试验组肺体积明显增大、被膜光亮、湿润，表面呈现红褐色或暗紫色，可见片状淤血出血斑。目前，国内大量研究表面，肺重系数是一个衡量肺水肿比较好且准确的指标。
大鼠经过结扎迷走神经可以在短时间内诱导肺水肿的发生，并且通过检测几项指标都可以观察到明显的变化，效果较好。夹闭迷走神经来诱导大鼠肺水肿动物模型简单易操作实施，成本小，重复性高，可以作为临床上比较理想的肺水肿动物模型
动物实验心得体会 篇13
来美国加州已经整整1个月，昨天才刚刚办好学校的身份卡，终于可以正式接受动物实验培训了。今天上午，本来是一个来自印度的博士负责培训，但后来她需要去上课，临时换成一个华裔博士（他不会说中文，我只听他说过“剪头发”三个字），这个陈博士很有一些侠客风骨，什么事情都比较主动帮助。他告诉我，最近几天的时间他都可以给我支配，让我十分感动。本文也作为来美1月的体会小结吧。
我要学习的具体内容是如何神经外手术后脑损伤动物模型，就是把老鼠的大脑大概1/6的部位切除。这个实验最重要的是保持手术过程的一致，由于手术容易脑出血，因此手术操作尽量轻柔。
今天上午9点前我早早来到实验室，等到10点后，陈博士过来来说现在就可以开始，我说很遗憾，12点我必须离开，因为我女儿的入学体检安排在1点，第一次做实验怕干不完，言外之意是等明天再说吧。他说没关系，干到什么程度你随时可以离开，我心里说那多么不好意思，如果试验进行到一半，后续的整理要老师来负责。不过我也希望能早点开工，于是就接受了。毕竟开始的有些突然，我本来是准备在他指导下自己来做全部的工作，结果大部分事情都是他帮忙，包括把动物从动物房拿到实验室，准备手术器械，准备手术显微镜等。整个实验中，所有的准备工作几乎都是陈博士代劳，我只做了最核心的工作，我想起在国内读博士的时候，许多技术活都是从打下手，当学徒开始的。
由于第一次做这个实验，动作比较缓慢，到12点才终于把脑子切掉，后面的缝合，以及动物护理等都没有时间做了，这些内容都留给陈博士了。
开始前，陈博士问我为什么要用这个模型，你过去不是做脑出血的模型吗？我说主要是觉得这个损伤是属于计划性损伤，比较符合临床实际，很适合开展预适应方面的研究。另外我觉得在中国目前使用的比较少，我也希望能把这个模型引进到中国。他听后非常高兴，认为我的观点是非常好的，他也这么认为。
结合最近见习的训练的情况，我觉得这里关于动物实验方面值得学习的内容有许多。这里暂时只讲几点体会。
一是对动物的管理非常严格。动物房的条件非常好，比实验室的卫生条件还要好，居住空间有明确的规定，一只大笼子内只能有2只大鼠。进入动物房必须登记，拿走几只动物，动物的编号和实验目的要详细记录。
二是实验步骤的记录非常详细。到具体实验过程，详细的记录更能体现。每只动物都有一个档案，编号，体重，麻醉时间，手术时间，每一个具体的操作步骤都有详细的记录。动物模型做好后，经过适当恢复，送回动物房，仍需要登记。当处死动物前，每个都需要进行行为学的记录，进行动物一般情况的观察和记录。然后处死动物，处死动物必须采用安乐死。动物处死后取出大脑要进行照相记录，然后根据实验目的对脑组织进行后续的处理。总之，在关于动物实验的整个过程都有非常详细的记录。如果那个动物有可能出现异常结果，可以回头寻找原因。过去有许多老师在进行研究生培养的督导时，经常建议能作好原始记录，但都是强调记录本如何规范，对内容和细节并不关心，实际上记录本的方式并不是理想的记录方式。原始记录不一定都要在一个本子上体现。
三是协作精神。我来这里一个月，听到最多的问题是，你要做什么研究，我们是否可以谈谈，实际上大家都非常相互关心别人的研究内容，随时开展相互讨论，相互请教的事情也随时可见，也有许多人出来结果过来请教如何解释。我的研究内容涉及到几个基本的内容，其中一个是动物模型，因为过去没有做过需要从头学习，结果本组内至少有一大半人都积极要求指导。即使那些不主动的，去看他们实验也是随时停下来让我看，并耐心给我解释注意细节。总的感觉是他们都希望把自己所有经验，所有技巧都不作任何保留传授给你。另外一个研究内容是动物行为学检测，这个因为需要其他人协助双盲对照，结果早就有人预约说可以帮助解决。总之，在这里大家的相互协作精神非常的普遍。你不会看到有人怕别人学走你的思想，怕别人掌握了你独门绝技。
动物实验心得体会 篇14
肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。
1材料与方法
1。1实验动物：SD大鼠24只，体重做任何处理；B组为实验组，将大鼠称重麻
200—290g，雌雄随意，由成都医学院实醉（用3。6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的验动物中心提供。量）后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断；1。2实验药品与试剂：3。6%水合氯酸。 C组也为实验组，将大鼠称重麻醉（用3。6%1。3实验仪器与器械：电子天平，注射器，水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，找烧杯，手术器械（解剖刀，解剖盘，解剖出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察剪刀，手术线眼科镊等）、滤纸，计时器大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身等。体抽搐等体征变化，0。5小时后处死所有大2方法鼠。在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，将实验动物随机分为3个组，A组B组C然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面组各8只大鼠。A组为假手术组，将大鼠称的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最重，麻醉（用3。6%水合氯酸麻醉，按后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数（肺100g/1mL的量）后，仅找出迷走神经，不系数=肺重量（g）/大鼠体重（kg））。
3实验结果现象
在整个实验中，B组C组中各有一只大鼠在剪断迷走神经时不慎将颈总动脉剪断，导致大出血死亡，A组B组C组都没有出现湿啰音，也无咳嗽，鼻孔与口腔无粉红色泡沫样液体出现，也没有抽搐，整个试验期间大鼠都没有死亡。根据实验结果现象分析，并没有出现肺水肿。4结论与讨论
肺水肿是临床较为常见的综合病症，有很多的致病因素。由于对其发病机尚未完全阐明，因此，常常借助于一些动物模型进行发病机制和相关治疗的试验研究。结扎迷走神经是急性肺水肿动物模型是常用的一种动物模型。迷走神经支配呼吸、消化两个系统的绝大部分器官以及心脏的感觉、运动以及腺体的分泌。因此，迷走神经损伤可引起循环、消化和呼吸系统功能失调。在这次试验中，结扎迷走神经一段时间后，即可观察到B、C与A组对照出现的显著性差异，首先为大鼠的呼吸急促、紫绀；试验中观察到A组大鼠双肺呼吸音清晰，试验B、C两组大鼠双肺呼吸急促浑浊，并且有少许的红色粘液出现在鼻孔，显示试验组发生肺水肿，肺泡弥散功能严重降低；试验后解剖各组大鼠，对照组双肺饱满，呈粉红色，表面光滑，未见淤血，肺切面未见溢出粉红色液体。试验组肺体积明显增大、被膜光亮、湿润，表面呈现红褐色或暗紫色，可见片状淤血出血斑。目前，国内大量研究表面，肺重系数是一个衡量肺水肿比较好且准确的指标。
大鼠经过结扎迷走神经可以在短时间内诱导肺水肿的发生，并且通过检测几项指标都可以观察到明显的变化，效果较好。夹闭迷走神经来诱导大鼠肺水肿动物模型简单易操作实施，成本小，重复性高，可以作为临床上比较理想的肺水肿动物模型
动物实验心得体会 篇15
细胞生物学是研究细胞生命活动规律的一门科学，细胞是生命的结构和功能单位，也是遗传和变异的单位。
有机体的一切病理现象都是细胞病理反应的结果，所以一切生命现象都可从细胞中得到解答。
现代分子生物学理论和技术的发展，科学家们开始在分子水平上逐步揭示细胞生命活动规律，并开始研究组织内和组织间细胞的相互关系和分子关联，这是现代细胞生物学的主要特点。
细胞生物学作为基础课，既有理论教学，又有实验教学，教学内容量大面广，对学生的知识、能力和素质具有直接和长远的影响。
教学内容要反映科学的发展，细胞生物学发展日新月异，新内容层出不穷。
因此，我们本着“实、宽、新、活”的原则，要求学生牢固掌握细胞的基本结构和功能及各细胞器间的关系的基本知识，并且能够掌握和了解细胞生物学的热点课题的现状和未来的发展趋势，包括生命信息流和细胞信息网络的研究、信号传递与细胞识别、蛋白质的加工、折叠与分选、发育的分子机制及遗传控制、细胞增殖、调控与编程死亡等。
《细胞生物学网络课程》集文字、图像、动画于一体，图文并茂。
既能作为本专科生的自学和教师教学使用、又能作为相关研究人员有价值的参考网络课程。
通过学习，掌握了课程的基本原理、内容体系、相关的研究手段以及细胞生物学在生命科学中的地位和应用，同时了解了相关的参考文献和，使自己既具有扎实的细胞生物学基础知识，又训练了获取知识的能力，从而使自己的综合素质进一步得到提高。
《细胞生物学网络课程》的总体教学模式是自主学习型。
通过大量的文本资料、图片、动画演示、多媒体辅助等手段为网上学习者展现细胞生物学的知识要点，通过多种表现手法，化解难点。
教学的重点体现在既兼顾基础，又注意与分子的衔接，重点是细胞器的结构体系和生物学功能。
从章节内容考虑，第四章(细胞膜与细胞表面)、第五章(细胞的'信号传递部分)、第六章(细胞基质与细胞内膜系统)、第八章(细胞核与染色体)、第十章(细胞骨架)、第十一章(细胞增殖及其调控)、第十二章(细胞分化与基因表达调控)和第十三章(细胞凋亡部分)是细胞生物学的重点内容，同时也是难点，需要认真学习和掌握。
生理学是生物科学的分支学科之一。
是以生物机体的生命活动现象和生命活动规律及其机体各个组成部分的功能为研究对象，此外，研究内容还包括了生理功能为适应内外环境变化而进行的调节机制和规律。
由于生理学是研究生命活动规律的科学，因此本课程在要求学生掌握基本概念、基本理论的同时，更加强调对学生科学思维能力、分析和解决问题的能力的培养。
本课程主要包括:以细胞生理学为主的有关生理活动的一般规律;与生命活动调控有关的神经生理学、感觉器官生理学及内分泌生理学;血液循环生理学、呼吸生理学、消化生理学、代谢与体温调节、泌尿生理学、生殖生理学等。
该课程是以动物学、解剖学、细胞生物学、生物化学与分子生物学为基础，以此为基础，在功能这一层面揭示生命活动的规律。
生理学是从功能这一层面比较系统的揭示生命活动的规律，从知识来看，是以阐述生命活动规律为核心，重构生命科学知识体系。
因此，内容十分复杂，范围广，难度大。
学习生理学应该做到两个准确，两个灵活，坚持一个主题，一个基本原则。
即准确把握知识的框架体系，准确掌握和理解基本概念，灵活运用基本概念和理论进行思考，灵活思考各个主题内容，重新构建自己的知识体系。
整个生理学课程以兴奋性为主题，以稳态及其维持为基本原则。
全部内容按系统分章节，各章节之间是有联系的，先做到章节内知识的联系，后做到章节间的知识联系，系统地提出问题，分部深入学习理解，然后再进行系统的总结总之，学习的收获是非常丰富，它引发我更多的思考，也让我收获了很多的知识。
然而，憧憬未来，我知道前方的道路依然是曲折的，毕竟这些思考和理论需要我在今后的教学实践中不断的去尝试和运用，并最终将其转化为自身的东西，我想只有这样才算是真正达到培训的目的
动物实验心得体会 篇16
本人之前从未接触过动物实验，实验室内也没有人做过动物实验，实验内容涉及小鼠灌胃，不知如何下手，内心有点慌，于是就从网上搜索视频开始学习。先买回来四只小鼠，想着练习基本的实验操作，本人之前连小鼠抓取都不太懂，虽然大学学习过，但几年没有接触还是手生的狠，这次就只好硬着头皮上了。好了废话不多说回归正题。
关于灌胃，小鼠的抓取很重要，右手抓住鼠尾，左手沿鼠背往上抓住颈背部皮毛，同时确保前肢皮毛也有部分抓取，这是为了固定小鼠前肢，防止注射时小鼠前肢抓握针头。抓取固定小鼠之后，取带有灌胃针的注射器，沿着小鼠右嘴角插入(因左手固定小鼠，所以沿右嘴角进针比较方便)，贴着小鼠上颌进针，然后再进针会遭遇抵触感，此时到达小鼠咽部，这时不要硬插针，稍微停一下，到达咽部后把针稍微挪动感觉放置咽喉中部，此时将注射器抬起与身体呈竖直的状态，再进针小鼠会有抵抗，但没有关系，顺着抵抗感慢慢进针，随后会有落空感，此时就表明针已进入小鼠胃中，注射药液，拔出针头即可。
希望对初做动物实验的.小白有所帮助，这都是反复尝试摸索出来的，之前能灌进去胃都是偶然时间，搞得小鼠受折磨，我也难受，掌握一点技巧，小鼠也能少受罪